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小鼠肺血管內皮細胞的分離培養與鑒定方法

更新時間:2025-12-11點擊次數:189
    小鼠肺血管內皮細胞是肺微循環的核心功能單元,參與氣體交換、炎癥調控及血管屏障維持。分離培養高純度PMVECs是研究肺血管生理病理機制的關鍵技術,以下為常用方法概述。
 
  一、細胞分離
 
  1.材料準備:選取6-8周齡健康C57BL/6小鼠,麻醉后無菌取肺組織;消化試劑含0.1%Ⅱ型膠原酶、0.01%DNA酶Ⅰ及0.25%胰蛋白酶,37℃預溫。
 
  2.組織解離:肺組織剪碎后經膠原酶消化30min,機械吹打至單細胞懸液,1000rpm離心5min去碎片;紅細胞裂解液處理5min去除紅細胞,PBS重懸后過40μm濾網。
 
  3.內皮細胞富集:利用內皮細胞特異性貼壁特性,將細胞接種于含10%胎牛血清的DMEM培養基預包被的培養皿,37℃、5%CO?孵育1-2h,未貼壁的成纖維細胞等雜質經換液去除,貼壁細胞即為初步富集的PMVECs。
 
  二、原代培養
 
  貼壁細胞用0.25%胰蛋白酶消化后傳代,采用含20%FBS、100U/mL青霉素、100μg/mL鏈霉素及1ng/mLVEGF的EGM-2MV專用培養基,每2-3天換液一次。細胞呈鋪路石樣生長,融合達80%-90%時可傳代,一般可傳3-5代保持表型穩定。
 
  三、細胞鑒定
 
  1.形態學觀察:倒置顯微鏡下可見細胞為多邊形或鵝卵石樣,邊界清晰,單層融合時無明顯重疊。
 
  2.免疫熒光標記:固定細胞后,用抗CD31(PECAM-1)、vWF(血管性血友病因子)或VE-cadherin(鈣黏蛋白)一抗孵育,FITC標記的二抗顯色,熒光顯微鏡下可見胞膜或胞質特異性陽性信號。
 
  3.功能驗證:DiI-Ac-LDL攝取實驗(37℃孵育2h后胞內出現紅色熒光顆粒);管腔形成實驗(Matrigel基質上形成網狀管樣結構)。
 
  注意事項
 
  分離過程需嚴格無菌操作,控制消化時間與溫度以避免細胞損傷;鑒定時需設置同型IgG陰性對照,排除非特異性染色。該方法可獲得純度>90%的PMVECs,適用于肺血管屏障、炎癥及纖維化等研究。